本教材从基础性实验，综合性实验和设计性实验3个层面设置了24和实验项目。只在培养学生的基本实验技能和综合创新能力。内容涵盖了光学显微技术、细胞化学技术、细胞器的分离和鉴定技术、染色体标本制作技术、细胞培养和细胞融合技术染色体畸变检测技术、细胞凋亡检测技术等。
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目录
第二版前言
第一版前言
第一部分 基础性实验
实验1 普通光学显微镜的使用、细胞的形态观察和大小测定 2
实验2 暗场显微镜和相差显微镜的使用 12
实验3 荧光显微镜的使用 18
实验4 细胞器的活体染色 25
实验5 细胞内核酸的原位显示 29
实验6 细胞内蛋白质的定位 32
实验7 细胞内酶的定位 34
实验8 细胞内糖类的显示 38
实验9 细胞内脂类的显示 40
实验10 酶联免疫吸附测定法 42
实验11 细胞活性的鉴定 47
实验12 细胞膜的通透性和巨噬细胞的吞噬活动 50
实验13 细胞凝集反应 54
实验14 果蝇唾腺细胞巨大染色体的观察 56
实验15 细胞的减数分裂 59
第二部分 综合性实验
实验16 常用显微镜制片技术 64
实验17 细胞骨架的光学显微镜观察 73
实验18 动物骨髓细胞染色体标本的制备 79
实验19 人外周血淋巴细胞培养与染色体标本制备 82
实验20 植物细胞染色体标本的制备 86
实验21 显示染色体核仁组织区的银染色法 88
实验22 荧光原位杂交技术定位端粒序列 91
实验23 细胞器的分离和鉴定 94
实验24 动物细胞培养 98
实验25 细胞增殖能力的检测——集落形成实验 106
实验26 MTT比色法检测细胞存活状态 109
实验27 培养细胞生长状态评价——有丝分裂指数和生长曲线测定 111
实验28 细胞同步化 114
实验29 流式细胞术测定细胞周期 117
实验30 动物细胞融合 120
实验31 植物原生质体的分离、融合和培养 124
实验32 细胞转染技术 128
第三部分 设计性实验
实验33 完整叶绿体的分离、纯化及观察 132
实验34 逆境对植物细胞膜系统的损伤和破坏 136
实验35 植物细胞悬浮培养 138
实验36 单细胞凝胶电泳试验检测细胞DNA损伤 140
实验37 环境有害物质对微核的诱导和检测 144
实验38 细胞凋亡的诱导和检测 147
实验39 植物次生代谢物质对肿瘤细胞增殖的影响 152
第四部分 附录
附录Ⅰ 常用染料简介和常用染色剂配方 156
附录Ⅱ 细胞生物学实验常用缓冲液的配制 165
附录Ⅲ 细胞生物学实验常用培养基的配制 172
附录Ⅳ 常用生物固定液 178
附录Ⅴ 封片剂和粘贴剂 184
附录Ⅵ 光学显微镜的维护 185
附录Ⅶ 电子显微镜技术 187
附录Ⅷ 器械的清洗与消毒 193
附录Ⅸ 实验室常用技术参数 196
附录Ⅹ 常用植物激素、抗生素的配制 202
附录Ⅺ 部分动物、植物及人的染色体数目 203
附录Ⅻ 撰写细胞生物学实验报告的要求 204
参考文献 212
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